histologie is de studie van menselijk weefsel. Deze term bestaat uit twee termen uit de Griekse en Latijnse taal. "Histos" betekent "weefsel" in het Grieks en "logos" staat voor "onderwijs" in het Latijn.
Wat is de histologie?
In de histologie gebruiken artsen technische hulpmiddelen zoals een lichtmicroscoop om de structuur van verschillende structuren te identificeren.
De microscopische anatomie verdeelt de organen op basis van hun componenten, die steeds kleiner worden naarmate het onderzoek naar de verschillende structuren gaat. De gebieden vroege diagnose, pathologie, anatomie en biologie hebben voornamelijk betrekking op dit medische gebied.
Behandelingen en therapieën
De microscopische anatomie verdeelt de organen in drie groepen op basis van hun grootte en componenten. Histologie als studie van menselijk weefsel is een belangrijk onderdeel van biologie, geneeskunde, anatomie en pathologie.
Cytologie gaat dieper in op de menselijke weefsellagen en behandelt celtheorie en functionele samenstelling. Moleculaire biologie is gewijd aan de kleinste componenten van menselijke cellen, de moleculen, ook wel deeltjes genoemd. De belangrijkste taak van histologie is de vroege diagnose van tumoren. Met behulp van de beste onderzoeksmethoden onderzoeken de artsen of er pathologische veranderingen zijn, d.w.z. kwaadaardige tumoren, of dat het weefsel nog gezond is en de tumoren goedaardig. Bovendien zijn de histologen in staat om zowel bacteriële, parasitaire en ontstekingsziekten als stofwisselingsziekten op te sporen.
De weefseltheorie vormt ook het startpunt voor latere therapeutische benaderingen die zijn gebaseerd op de histologische bevindingen. Histologen en pathologen gebruiken histologie om "kleine dingen groot of zichtbaar" te maken. Een deel van het zieke weefsel wordt bij de patiënt verwijderd door middel van een steekproef (biopsie). Een patholoog onderzoekt dit weefselmonster vervolgens door micrometerdunne snijpatronen te maken. In de volgende stap worden deze patronen gekleurd en bekeken onder de lichtmicroscoop. Soms wordt ook een hoge resolutie elektronenmicroscoop gebruikt, maar deze wordt vooral gebruikt bij onderzoek. Voorafgaand aan het onderzoek behandelt histotechnologie hoe het weefsel wordt verwerkt. Een medisch technisch assistent (MTA) is verantwoordelijk voor deze stap. Het fixeert het weefsel om stabilisatie te bereiken.
De assistent kijkt macroscopisch (met het oog) naar het afgesneden weefsel, laat het leeglopen en drenkt het in vloeibare paraffine. Het weefselmonster wordt vervolgens geblokkeerd in paraffine en in de volgende stap wordt een snede gemaakt met een diameter van 2 tot 5 µm. Deze is aan de glasplaat bevestigd en gekleurd. De routinematige stand van de techniek is de vervaardiging van een FFBE-preparaat, een "in formaline gefixeerd in paraffine ingebed weefsel". Het weefselmonster wordt gekleurd in een hematoxyline-eosine. Dit proces duurt een dag of twee van de eerste tot de laatste stap. Een snel sectieonderzoek is een minder tijdrovend weefselonderzoek. Dit gebeurt altijd als de chirurg tijdens een operatie informatie nodig heeft over het verwijderde weefsel.
Als de chirurg bijvoorbeeld een tumor uit de nier verwijdert, heeft hij tijdens de operatie informatie nodig over de aard van het weefsel. Hij moet weten of de tumor al volledig is verwijderd of dat kwaadaardig weefsel aan de randzones wijst op verdere pathologische veranderingen. De bevindingen van het snelle sectieonderzoek bepalen het verdere verloop van de operatie. Het weefselmonster wordt binnen tien minuten ingevroren bij -20 ° C en gestabiliseerd. Een doorsnede van 5 tot 10 µm wordt gemaakt met behulp van een microtoom, als een glaasje op een glasplaat bevestigd en gekleurd. De bevindingen worden direct doorgestuurd naar de operatiekamer zodat de chirurg een beslissing kan nemen over het verdere verloop van de operatie.
Diagnose- en onderzoeksmethoden
De belangrijkste technische hulpmiddelen in de histologie zijn de verschillende kleuringsmethoden. De histologie classificeert de celstructuren op basis van hun kleurreactie op de gebruikte kleurstof. Dit zijn biologische kleuren. Neutrofiele celstructuren worden niet gekleurd door zure of basische kleurstoffen.
De ingrediënten zijn lipofiel. Basofiele celstructuren werken met basiskleurstoffen zoals hematoxyline. Acidofiele celstructuren worden gekleurd door basische en zure kleurstoffen zoals eosine, zure fuchsine en picrinezuur. Andere celstructuren zijn nucleofiel en argyrofiel. Argyrofiele celstructuren binden zilverionen, nucleofiele DNA-binding en basische kleurstoffen. De hematoxyline-eosine-kleuring (HE-kleuring) wordt het meest gebruikt als routinematige en overzichtskleuring door computergestuurde kleurmachines. Tegelijkertijd worden speciale handmatige kleurstoffen gebruikt voor individuele vragen.
Histochemisch onderzoek geeft een complex beeld van chemisch-fysische processen met betrekking tot elektro-absorptie, diffusie (distributie) en grensvlakadsorptie in verband met de ladingsverdelingen binnen de kleurstofmoleculen. De ionische binding creëert de belangrijkste bindende kracht door zure kleurstoffen te binden aan basische eiwitten. Bij histochemische processen reageert een kleurstof op een weefselcomponent. Enzymhistochemische methoden veroorzaken kleurontwikkeling door de activiteit van de eigen enzymen van de cel. Klassieke histologie wordt sinds de jaren tachtig aangevuld met immunohistochemie. Dit bewijst de celeigenschappen op basis van een antigeen-antilichaamreactie. Dit wordt zichtbaar gemaakt door een meerdelige techniek op basis van de kleurreactie ter plaatse van het antigeen (eiwit).
In situ hybridisatie werd een decennium later uitgevonden. Bepaalde nucleotidesequenties worden gedetecteerd door dubbelstrengs DNA te smelten en spontaan enkele strengen te koppelen met behulp van RNA of DNA. De nucleïnezuursequenties worden weergegeven met behulp van probes met fluorochroom-labeling. Deze methode staat bekend als fluorescentie in situ hybridisatie (FISH).
Belangrijke kleuringsmethoden zijn de azankleuring, Pruisisch-blauw-reactie, Golgi-kleuring, Gram-kleuring en Giemsa-kleuring. Deze kleuringsmethoden werken met rode celkernen, roodachtig cytoplasma, blauwe reticulaire vezels en collagenen, rode spiervezels, de detectie van "driewaardige ijzerionen", het verzilveren van individuele ionen, bacteriële differentiatie en differentiërende bloedcelkleuring.
.jpg)
.jpg)
